流行病学研究表明,全世界有超过5亿人受到过敏性鼻炎(AR)的影响,尤其是儿童[
白介素-17主要由Th17细胞分泌,在变应性疾病中发挥重要作用。例如,在哮喘患者的肺、痰和支气管肺泡灌洗液(BALF)中发现IL-17 [
ILC2广泛分布于脂肪相关淋巴组织、肠、肺、皮肤中,是早期免疫反应的重要成员。近期研究表明,ILC2s可产生IL-17,并表达较高水平的维甲酸受体相关孤儿受体-
瘦素是肥胖(ob)基因编码的一种16kda非糖基化多肽,可调节能量稳态、神经内分泌功能、血管生成、造血和T细胞激活和功能[
2019年1月至2019年6月在广州市妇女儿童医疗中心入组15例屋尘螨单敏AR患者和15例健康对照。过敏性鼻炎的定义参照《过敏性鼻炎及其对哮喘的影响指南》(2010)。诊断标准包括典型症状和病程(>2年),过敏原试验阳性
采用淋巴组织(Fresenius Kabi Norge AS, Oslo, Norway)密度梯度离心法分离AR患者外周血单个核细胞(PBMCs)。PMA (50 ng/ml, Sigma-Aldrich)、碘霉素(500 ng/ml, Sigma-Aldrich)和Brefeldin A (BD, Oxford, United Kingdom)刺激4小时。同时加入IL-25 (50 ng/ml)、IL-33 (50 ng/ml)、TSLP (50 ng/ml)和IL-2 (10 U/ml) (R&D Systems, USA)刺激ILC2。然后用CD2 (rpa2,10), CD3 (OKT3), CD14 (61D3), CD16 (CB16), CD19 (HIB19), CD56 (TULY56), CD235a (HIR2), eBioscience, San Diego, CA), FceRI (9E1, eBioscience)和CD45抗体(2D1), CRTH2 (BM16, BD Biosciences, NJ), CD127抗体(HIL-7R-M21, BD Biosciences, NJ)对PBMCs进行染色以鉴定ILC2s。采用Cytofix (BD Biosciences, NJ)细胞内细胞因子染色法,按照制造商说明书的要求,检测PBMCs中IL-5 (JES1-39D10)-、IL-13 (JES10-5A2)-和IL-17A (BL168)-阳性ILC2细胞。本试验采用Beckman流式细胞仪(Beckman Coulter, Hercules, CA, USA)。
在耗尽系谱阳性(Lin+)细胞通过荧光素异硫氰酸酯- (FITC-)偶联抗体CD2、CD3、CD14、CD16、CD19、CD56、CD235a和Fc
用TRIzol试剂(Life Technologies, Carlsbad, California)从ILC2s中分离总RNA。用cDNA试剂盒(Qiagen)合成cDNA。采用ABI PRISM 7300检测系统进行PCR扩增。结果归一化为GAPDH。本研究使用的引物如下:ROR
采用制造商所述的ELISA试剂盒(R&D Systems, USA)测量ILC2上清中IL-17的水平。leptin (22 pg/ml)和IL-17 (15 pg/ml)测定的敏感性分别为:leptin (22 pg/ml)和IL-17 (15 pg/ml)。
采用GraphPad Prism软件。Kruskal-Wallis组的差异有统计学意义
研究对象的特征见表
AR和对照组患者的人口学特征。
组 | AR群 | 控制 |
---|---|---|
数量 | 15 | 15 |
性别(男:女) | 8: 7 | 8: 7 |
年龄(年) | 24.6 (18-42) | 27.3成熟女性(18 - 45) |
身体质量指数 | 20.5 (18.7 - -22.7) | 21.2 (19.3 - -23.4) |
TIgE(国际单位/毫升) | 178.2 (48.5 - -671.3) |
38.7 (22.5 - -58.9) |
AR与对照组血清瘦素表达及产生il -17的ILC2s频率的比较ILC2控制策略和代表流式细胞仪显示IL-17-producing ILC2频率(a, b)。血清的蛋白表达瘦素和频率IL-17-producing ILC2s 15 AR患者和15之间ELISA控制(c, d)。血清中瘦素和频率之间的相关性IL-17-producing ILC2s 15 AR患者(e)。
当仅在分选细胞中加入PBS时,AR患者产生il -17的ILC2s的频率几乎无法检测到。CC (IL-25 (50 ng/ml)、IL-33 (50 ng/ml)、TSLP (50 ng/ml)和IL-2 (10 U/ml)的添加增加了产生il -17的ILC2s的频率。此外,与CC相比,瘦素与CC的结合进一步增加了il -17产生ILC2s的频率(图)
瘦素诱导产生il -17的ILC2s依赖于ROR
与对照组相比,ILC2培养上清中IL-17的产生也在瘦素刺激后上调(图)
产生il -17的ILC2s同时表达IL-5和IL-13。流式细胞术检测IL-5、IL-13、IL-17在ILC2上的表达。CC:细胞因子组合:IL-25 (50 ng/ml)、IL-33 (50 ng/ml)、TSLP (50 ng/ml)、IL-2 (10 U/ml)。本实验采用6例AR患者,每次实验均进行3次独立试验。
在本研究中,我们发现瘦素诱导ILC2细胞产生IL-17依赖于ROR
由脂肪组织产生的瘦素在免疫中起着重要作用[
ILC2的扩增和发育需要IL-2、TSLP、IL-25、IL-33等细胞因子。IL-25促进炎性ILC2增殖(Lin−IL-17RB高KLRG1高ST2−),而IL-33诱导自然的ILC2s (Lin-IL-17RB低KLRG1intST2+) [
我们的数据表明,leptin的添加增强了IL-17+ ILC2细胞的扩张和IL-17的产生。而且,这个过程依赖于ROR的表达式
先前的研究也表明,Ahr在ILC的调节中起着重要作用。例如,Ahr是维持肝内ILC1和ILC3维持和功能所必需的[
与之前的研究一致,我们的研究结果还表明,leptin诱导的ILC2s同时产生IL-5和IL-13,这与记忆/效应细胞IL-17+Th2相似。这些数据提示瘦素诱导的ILC2同时具有ILC2和Th17细胞的特征。
我们的研究也有一些局限性。首先,我们通过瘦素刺激血液ILC2。但瘦素对局部ILC2(如肺和鼻组织)的影响尚未探讨。其次,本研究没有使用动物模型,这也限制了我们的结论。第三,未探讨瘦素诱导的ILC2与Th17细胞的相互作用。
总之,我们的数据提供了初步证据,表明瘦素诱导ILC2细胞产生IL-17依赖于ROR
用于支持本研究发现的数据可由通讯作者要求提供。
研究方案得到了当地伦理委员会的批准。
获得书面知情同意。
作者声明他们没有相关的利益冲突。
文彦辉、曾庆祥、罗西等人对这部作品都有贡献。
本研究由国家自然科学基金资助项目(No. 81600785, No. 81700892, No. 81970861),广州市珠江科技新星计划资助项目(No. 201710010085),广州市妇女儿童医疗中心临床重点专科资助,国家自然科学基金(No. 81600785, No. 81700892, No. 81970861)资助。广州市妇女儿童医疗中心儿科研究所资助项目(YIP-2016-022、prensfc -2018-005),东莞市社会科学技术发展(重点)项目(201950715024194),广东省自然科学基金资助项目(2016A03031016)。