基于证据的互补和替代医学

基于证据的互补和替代医学/2020./文章

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体积 2020. |文章ID. 3573240. | https://doi.org/10.1155/2020/3573240

Ting Fang,Ying-Xuan Yan,Yue Yang,Ya-xin LV,清齐常,丹丹张 乙酸乙酯馏分Hedyotis diffusa+黄芩barbata通过OPN-FAK / ERK / NF抑制骨转移乳腺癌细胞的迁移κ..B轴“,基于证据的互补和替代医学 卷。2020. 文章ID.3573240. 7. 页面 2020. https://doi.org/10.1155/2020/3573240

乙酸乙酯馏分Hedyotis diffusa+黄芩barbata通过OPN-FAK / ERK / NF抑制骨转移乳腺癌细胞的迁移κ..B轴

学术编辑器:Armando Zarrelli.
收到了 2019年11月03日
修改后的 2020年3月22日
公认 2020年3月23日
发表 2020年4月10

抽象的

Hedyotis diffusa+黄芩barbata是一种常用于治疗炎症相关疾病和各种类型的肿瘤的药用的对联。然而,该对联对对联对肿瘤细胞迁移的影响尚未阐明。借助MCF-7-BOM,ER +乳腺癌MCF-7的骨转移宿盲,我们表明乙酸乙酯馏分以相等的重量比提取Hedyotis diffusa+黄芩barbata(EA11)以浓度依赖性的方式抑制MCF-7-BOM的细胞迁移。为了明确其潜在的分子机制,我们发现EA11降低了骨桥蛋白(OPN)的表达,并干扰了FAK/ERK/NF-κ..B信号通路,对乳腺癌骨转移至关重要。该研究强烈建议EA11可以代表潜在的治疗剂免受乳腺癌骨转移的潜在治疗剂。

1.介绍

转移是全世界乳腺癌患者生存的严重威胁[12[骨转移发生在大约65%的晚期乳腺癌患者中。骨转移患者患有骨痛,病理骨折,高钙血症和脊髓压缩,而五年的存活率约为20%[3.4.].传统的骨转移治疗方法包括放疗、化疗、靶向治疗、内分泌治疗和骨调节药物治疗。然而,目前可用的干预措施的有效性有限[5.].

作为分泌的二醇磷蛋白和由基因SPP1编码的骨桥蛋白(OPN)参与骨质重塑中的骨基质矿化和重吸收过程。在各种肿瘤中检测到OPN的异常表达(乳腺癌,前列腺癌,肺癌,胃癌和黑色素瘤),并且与乳腺癌的开始,转移和预后密切相关[6.7.].实验证据还支持OPN在乳腺癌骨转移中的作用。在最近的研究中,局灶性粘附激酶(FAK)途径的激活被报告为OPN诱导的细胞迁移的必然事件[8.].也发现opn通过其结合激活ERK1 / 2α.V.β3整合在[9.,这反过来又促进了乳腺癌的进展。此外,OPN已被证明通过NF-增强癌细胞的侵袭性κ..B介导的信号机制[10].这些发现表明,靶向OPN相关的信号传导途径可能是患乳腺癌骨转移的潜在治疗策略[1112].

中药(TCM)已被广泛用作中国恶性肿瘤的必要佐剂治疗。Hedyotis diffusa,茜草科家族的植物,含有黄酮类,多糖,三萜类化合物,甾醇和三萜类化合物。许多食材Hedyotis diffusa具有抗氧化、抗炎、抗肿瘤活性。Hedyotis diffusa通常用于治疗乳腺癌、结肠癌、肝癌和肺癌[13-15].黄芩barbata属于唇形科,具有抗肿瘤活性。同样的,黄芩barbata也常用于治疗各种肿瘤[1617].特别是,Hedyotis diffusa+黄芩barbata常作为对联药用于治疗各种炎症相关疾病和癌症[1819].

我们之前报道EA11具有有效的抗炎活动[20.].由于慢性炎症是癌症的标志之一,我们研究了EA11对MCF-7-BOM细胞迁移的影响,进一步探索了相关的分子机制。

2。材料和方法

2.1.试剂和化学物质

Hedyotis diffusa黄芩barbata购自上海洋河塘药业有限公司(中国上海张江高科技园区),并经上海食品药品监督管理局(SIFDC)确认。MCF-7-BOM由美国密西西比大学Dr. Yu-dong Zhou提供。Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) medium dry powder、胎牛血清和0.25% trypsin从Gibco BRL (Grand Island, NY, USA)中获得。3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基溴化四唑(MTT)和二甲基亚砜(DMSO)购自Sigma-Aldrich公司(St. Louis, MO, USA)。所用抗体的来源有Proteintech(芝加哥,IL,美国)的抗opn抗体(22952-1-AP), Bioworld Technology (St. Paul, MN, USA)的anti-p-FAK (BS4718),以及anti-FAK (#3285), anti-NF-κ..B(#3033),抗P-NF-κ..B (#8242), anti-ERK1/2(#9102)和anti-p- ERK1/2(#9101)来自Cell Signaling Technology (Boston, MA, USA)。

2.2.EA11主要成分的制备与鉴定

EA11是制备的,如前所述,并进一步表征HPLC [20.].

2.3.细胞培养

在含有10%胎牛血清的DMEM培养基中培养MCF-7-BOM细胞,并在37℃下孵育5%CO2培养箱(Thermo, Waltham, MA, USA)。细胞每2-3天传代一次。

2.4。细胞活力测定

MCF-7-BOM细胞以2 × 10的密度接种于96孔板中3.每孔细胞过夜。然后用EA11(0, 12.5, 25, 50, 100和200)处理细胞μ.g/ml)或0.25% DMSO(对照剂)处理72 h后,加入20μ.L含量为5mg / ml mTT溶液。孵育4小时后,除去孔中的培养上清液,100 μ.加入L的DMSO溶液完全溶解晶体。490nm处的光学密度值由板式读取器(Molecular Devices,Ca,USA)测量。

2.5。伤口愈合测定

将MCF-7-BOM细胞以6×10的密度接种在6孔板中5.每孔细胞过夜。用无菌吸管头产生划痕,然后冲洗几次以清除脱落的细胞。然后细胞在含有0、25和50的完全培养基中培养μ.G / ml EA11并在0,24和48小时下拍摄的光学显微镜(100x)(奥林巴斯,东京,日本)。通过监测间隙的大小来确定细胞迁移。

2.6。Transwell迁移测定

用或没有EA11处理24小时处理的MCF-7-BOM细胞被覆盖到上室(8 μ.米孔隙大小;康宁康复,我,美国)在5×104.每孔600个细胞μ.将无血清培养基加入下腔室中。在24小时细胞迁移后,用棉拭子除去上腔室中的细胞,并用0.5%晶体紫定固定腔室下表面上的细胞。在光学显微镜(200×)下拍摄照片,通过计数染色细胞定量细胞迁移。

2.7。入侵分析

为了评估MCF-7-BOM细胞的侵袭,首先用EA11处理细胞24小时,然后加入Matrigel涂覆的Transwell板的上腔室(8 μ.米孔隙大小;美国康宁公司)的密度为2 × 105.每孔600个细胞μ.L中加入下室中的L培养基。在22小时侵袭期后,用棉拭子除去剩余在上室中的细胞,而上腔间下表面上的细胞用0.5%晶体紫色染色。通过在光学显微镜(200×)下染色细胞计数染色细胞来测量体外侵入。

2.8。免疫印迹分析

使用含蛋白酶的细胞裂解物(Beyotime技术,江苏,中国)洗涤细胞并在冰上裂解并裂解。每个样品的蛋白质浓度由BCA蛋白质测定试剂盒(Thermo Fisher Scientific,Waltham,MA,USA)测定。蛋白质样品(30 μ.g/lane)在10% SDS-PAGE上分离,转移到PVDF膜上。用5%脱脂牛奶阻断后,用各自的抗体对膜进行印迹,并使用ECL Western Blotting检测试剂(Millipore, Bedford, MA, USA)在Tanon成像系统(Tanon, Shanghai, China)上进行可视化。

2.9。统计分析

采用SPSS 20.0版本的方差分析进行统计分析,所有实验至少重复三个独立实验。结果以均数±标准差表示。的价值 被认为是显着的。

结果

3.1.EA11对MCF-7-BOM细胞生长的影响

为了确定EA11对MCF-7-BOM细胞生长的影响,用不同浓度的EA11处理细胞72小时,然后MTT测定测量细胞生长。通过与未经处理的细胞进行比较,我们观察到EA11在100 μ.G / ml显着抑制MCF-7-BOM细胞的生长( (数字1),表明EA11浓度<100 μ.g / ml很少细胞毒性。

3.2。EA11抑制MCF-7-BOM细胞迁移和侵袭体外侵袭

作为浓度<100的EA11 μ.g/ml的细胞毒性很小,我们研究了浓度为25和50的EA11对细胞迁移的影响μ.克/毫升。创伤愈合和Transwell试验均表明,EA11以剂量和时间依赖性的方式阻止MCF-7-BOM细胞的迁移( (数字2)。在一个平行的实验中,我们通过Matrigel侵袭室检查了EA11对MCF-7-BOM细胞的侵袭性的影响。虽然MCF-7-BOM细胞容易被侵入Matrigel,但EA11以浓度依赖的方式阻断了这些细胞的体外侵袭( (数字3.)。

3.3。EA11下调MCF-7-BOM细胞中OPN的表达

据报道,OPN参与乳腺肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭,并与骨肿瘤微环境相关[21].为了确定细胞迁移和侵入中的EA11-LED抑制是否在功能上与OPN相关联,我们分析了EA11对MCF-7-BOM细胞中OPN表达的影响。同样,对于我们用细胞迁移/侵袭观察到的,Western印迹显示EA11剂量依赖地降低了MCF-7-BOM中的opn的丰度( (数字4.)。

3.4.EA11干扰FAK/ERK/NF-κ..B MCF-7-BOM细胞中的信令途径

OPN与整合素的结合已被证明可调节乳腺癌细胞的迁移和侵袭,而局部粘附激酶(FAK)信号通路的激活对OPN调节细胞迁移/侵袭至关重要[8.].ERK / MAPK信令路径在FAK下游功能以促进细胞迁移,而据报道,opn的增强水平与升高的NF-相关κ..B乳腺和肝脏肿瘤的活性[10].为了研究ea诱导的OPN表达减少和这些信号通路之间的潜在联系,我们用浓度为0、25和50的EA11处理MCF-7-BOM细胞μ.G / ml,然后是蛋白质印迹检测磷光体 - FAK,磷光体 - ERK和磷光体 - NF-κ..B. FAK, ERK和NF-的磷酸化κ..B在MCF-7-BOM细胞中可见。相反,EA11降低了FAK、ERK和NF-的磷酸化水平κ..B( (数字5.),暗示FAK / ERK / NF的干扰κ..EA11介导的B信号很可能与EA11介导的OPN表达抑制和细胞迁移/侵袭有关。

4。讨论

晚期乳腺癌常伴有肺、肝、脑和骨的临床转移[22].在骨转移期间,乳腺癌细胞必须经历侵袭转移级联以将自己转化为转移细胞[2324].在到达骨头位点后,癌细胞通常浓缩在内皮内,然后在骨微环境中破裂成骨细胞和骨细胞之间的微妙平衡。这种平衡的扭曲破坏了正常的骨质重塑和完整性,最终导致骨破坏[2526].在分子水平上,骨保护素(OPG)-RANKL比值异常引发溶骨转移的恶性循环[2728].

乳腺癌和前列腺癌患者的蛋白质表达水平增加,预后差和存活缩短。已经显示下调OPN表​​达来阻止乳腺癌的进展和转移,表明OPN作为肿瘤进展和转移的重要介质。OPN对骨骼显示特定亲和力的事实进一步突出了其在骨转移中的重要性[7.2930.].在本研究中,我们发现EA11显著降低了MCF-7-BOM细胞中OPN的表达,并极大地抑制了细胞迁移和体外侵袭。

nf-κ..B激活对于各种整合素信号传导和肿瘤转移至关重要[10].nf-κ..已显示B抑制剂抑制OPN诱导的细胞迁移[9.].其中一个例子是用NF-处理A549细胞κ..B抑制剂(PDTC)或IKappab蛋白酶抑制剂(TPCK)阻断OPN诱导的肺癌细胞迁移[31].最近的研究还表明,OPN可以增加A549细胞中磷光体-FAK,AKT和ERK的水平,表明它们可能是OPN-LED细胞迁移的介质。由于OPN刺激的ERK磷酸化由FAK突变体减少,而FAK和ERK2突变体可以减少OPN诱导的NF-κ..B激活,这些研究的结果表明,由FAK,ERK和NF-组成的信号轴κ..B调节OPN对细胞迁移和侵袭的调节[9.].我们观察到EA11抑制乳腺癌细胞迁移/侵袭并干扰FAK / ERK / NF-的激活κ..B信号通路表明EA11可以是抗乳腺癌细胞骨转移的活性剂。

5.结论

我们的结果表明,EA11抑制MCF-7-BOM细胞的迁移。ea11诱导的细胞迁移抑制很可能与抑制OPN表达和FAK/ERK/NF-失活有关κ..B信令途径。该研究表明EA11可以作为治疗乳腺癌骨转移的潜在治疗剂。

数据可用性

用于支持本研究发现的原始数据可由通讯作者要求提供。

利益冲突

提交人声明有关本文的出版物没有利益冲突。

作者的贡献

方廷、晏颖萱、杨乐乐对这部作品的贡献是相同的。

致谢

国家自然科学基金项目(no . 81773946, no . 81573673, no . 81001666);上海中医药大学本科生创新项目(no . 201810268036)。关键词:边坡,边坡稳定性,边坡稳定性

参考

  1. F. Bray,J.Ferlay,I. Soerjomataram,R.L.Siegel,L. A. Torre和A. Jemal,“2018年全球癌症统计数据:185个国家的36个癌症的全球发病率和死亡率估计,”CA:临床医生的癌症杂志,卷。68,没有。6,pp。394-424,2018。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  2. K. D. Miller,L. Nogueira,A. B.Mariotto等,“癌症治疗和生存统计,2019年,”CA:临床医生的癌症杂志,第69卷,第2期5, pp. 363-385, 2019。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  3. A.T.Blank,D. M. Lerman,N.M.Patel和T.B.RAPP,是预防性干预比转移性骨病中病理骨折的治疗更具成本效益更具成本效益?“临床骨科及相关研究,第474卷,第2期。7, pp. 1563-1570, 2016。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  4. Z.Xiong,G. Deng,X. Huang等,“初始转移性乳腺癌中的骨转移模式:基于人群的研究”癌症管理与研究,卷。10,pp。287-295,2018。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  5. L. Thibaudeau, V. M. Quent, B. M. Holzapfel, A. V. Taubenberger, M. Straub,和D. W. Hutmacher,“模拟乳腺癌诱导的体内骨转移:当前移植模型和先进的人源化策略,”癌症和转移评论第33卷第3期2-3, pp. 721-735, 2014。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  6. X. Han,W.Wang,J. He,L. Jiang和X. Li,“骨桥蛋白作为骨肉瘤治疗和预后的生物标志物”肿瘤学纪念碑,第十七卷,第二期17, pp. 2592-2598, 2019。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  7. C. Hao,Y. Cui,S. Owen,W.Li,S. cheng和W.G.Jiang,“人骨桥蛋白:癌症中的潜在临床应用(审查),”国际分子医学杂志第39卷第3期6, pp. 1327-1337, 2017。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  8. M. Han,J.-K.Wen,B. Zheng,Z. Liu和Y. Chen,Integrind封锁β骨桥蛋白激活的3-FAK信号通路抑制球囊损伤后新内膜形成心血管病理,第16卷,第5期。5,pp。283-290,2007。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  9. Y.-J.陈,Y.Y.魏,H.-t.Chen等,“骨桥蛋白,通过迁移和MMP-9通过α.V.β3整合丁,FAK,ERK和NF-κ..人软骨肉瘤细胞中的b依赖途径细胞生理学杂志第221卷第1期1, pp. 98-108, 2009。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  10. 我。井上,J. Gohda, T.秋山,K. Semba, " NF-κ..B癌症的发展和进展激活,“癌症科学第98卷第1期3,页268-274,2007。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  11. Wei R., J. P. C. Wong, H. F. Kwok,“骨桥蛋白-一种有前景的癌症治疗生物标志物,”癌症杂志,卷。8,不。12,pp。2173-2183,2017。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  12. M.Kovacheva,M. Zepp,M. Schraad,S. Berger和M. R. Berger,“骨桥蛋白的有条件敲低抑制乳腺癌骨骼转移”,“国际分子科学杂志,卷。20,没有。2019年19日。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  13. C.王,X.周,Y. Wang等人,“抗肿瘤成分来自Hedyotis diffusaWilld,“分子,卷。22,没有。2017年12月12日。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  14. 李玉玲,张军,闵德良,张红艳,林宁,李秋生,“1,3-二羟基-2-甲基蒽醌及其乙酸乙酯部位的抗癌作用Hedyotis diffusaWILLD针对通过细胞凋亡介导的HEPG2癌细胞,“《公共科学图书馆•综合》,第11卷,第5期。文章编号e151502, 2016。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  15. Q. Li,Z.Lai,Z. Yan等人,“Hedyotis Diffusa Willd通过调节PI3K / AKT信号通路来抑制增殖并诱导5Fu抗性结直肠癌细胞的凋亡,”分子医学报告,第十七卷,第二期1,pp。358-365,2018。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  16. X. Zheng,W.康,H.刘和郭,“总黄酮的抑制作用Sculellaria Barbata.D.通过下调PTHRP途径,DON在人乳腺癌骨转移中,“国际分子医学杂志号,第41卷。6, pp. 3137-3146, 2018。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  17. 孙p,孙d,王旭东,“影响黄芩barbata多糖对人结肠癌HT29细胞增殖、凋亡和EMT的影响碳水化合物聚合物,卷。167,pp。90-96,2017。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  18. Y. C. YEH,H. Y.陈,S. H. Yang等人,“Hedyotis diffusa结合黄芩barbata是用于乳腺癌患者的中草药的核心处理:基于人口的研究,“基于证据的互补和替代医学, 2014年第4卷,文章编号202378,9页,2014。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  19. 潘立田,尚勇,郭文平,荣志斌,蔡志明,"Hedyotis diffusa+黄芩barbata通过下调miR-155表达抑制Akt信号通路诱导膀胱癌细胞凋亡,“基于证据的互补和替代医学,卷。2016年,第9174903号,10页,2016年。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  20. Xu y, X. X. Chen, Y. X. Jiang, D. D. Zhang, " plus乙酸乙酯部位通过调节miR-155表达和JNK信号通路发挥抗炎作用",基于证据的互补和替代医学,卷。2018年,第3593408款,11页,2018。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  21. H.Nemoto,S. R. Rittling,H. Yoshitake等,“骨桥蛋白缺乏症减少了对骨骼和软组织的实验肿瘤细胞转移,”骨与矿物研究杂志,第16卷,第5期。4,页652-659,2001。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  22. S. Paget,“乳腺癌癌症中次生生长的分布。1889年,“癌症转移的评论,卷。8,不。2,pp。98-101,1989。视图:谷歌学术搜索
  23. S. Valastyan和R.Weinberg,“肿瘤转移:分子见解和不断发展的范式”,细胞第147卷2, pp. 275-292, 2011。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  24. S. A. Park,M. S. Jeong,K。HA,S.B.Jang,“血管内皮生长因子及其受体系统的结构和功能”,BMB报告第51卷第1期2, pp. 73-78, 2018。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  25. Y. Kang, P. M. Siegel, W. Shu等,“介导乳腺癌骨转移的多基因程序”,癌细胞,卷。3,不。6,PP。537-549,2003。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  26. X. H.-f.张,王,W.Gerald等,“乳腺癌的潜在骨转移,与SRC依赖生存信号相关,”癌细胞,第16卷,第5期。1,pp。67-78,2009。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  27. W. C. Dougall,“分子途径:逐渐肿瘤/等级/ opg途径的骨质核苷酸依赖性和骨质蛋白型障碍的作用,”临床癌症研究第18卷第2期2, pp. 326-335, 2012。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  28. W. S. Simonet, D. L. Lacey, C. R. Dunstan等,“骨保护素:一种参与骨密度调节的新型分泌蛋白”,细胞,卷。89,没有。2,pp。309-319,1997。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  29. C. Reufsteck, R. Lifshitz-Shovali, M. Zepp等人,“沉默骨骼转移相关基因损害乳腺癌细胞的迁移并减少骨溶解性病变,”临床及实验转移,第29卷,第2期5, pp. 441-456, 2012。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  30. X. Pang,K.Gong,X. Zhang,S. Wu,Y. Cui和B.-z。钱,“骨桥蛋白作为骨转移和耐药耐药性的多方面驾驶员”药理研究,第144卷,第235-244页,2019。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索
  31. 研究。方,研究所。刘,彭译葶。黄等人的研究表明,骨桥蛋白通过激活肿瘤细胞来增加肺癌细胞的迁移α.V.β3整合蛋白/ fak / akt和nf-κ..B依赖途径,“肺癌号,第64卷。3, pp. 263 - 270,2009。视图:出版商的网站|谷歌学术搜索

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